客户咨询热线:
18964508029
Technical articles技术文章
首页 > 技术文章 >使用纳米颗粒的药物递送

使用纳米颗粒的药物递送

 更新时间:2023-07-27  点击量:980

1.引言

 

ISO/TS 276871和ASTM E24562都将纳米粒子定义为100nm及以下的粒径,使其成为使用广泛的分类。由于科学和其他原因,不太严格的解释扩大了上限范围。现在许多大于100nm的纳米材料通常被称为纳米颗粒。开发这种尺寸范围的药物产品的动机在于改善其溶出度/生物利用度、靶向性、系统中的循环时间和药代动力学。

 

这些药物的研究许多是为了增强靶向性而开发的。被动靶向方法通过减小尺寸并用诸如聚乙二醇(PEG)的涂层掩盖纳米颗粒来增加循环时间。主动靶向方法改变纳米颗粒的表面以寻找并粘附于身体的特定部位,同时避免健康组织,例如癌症肿瘤。可以添加纳米颗粒表面上的细胞特异性配体以特异性结合互补受体。

 

Nicomp 3000系列纳米粒度仪(图1)是用于测量药物递送的纳米颗粒粒径和zeta电位(表面电荷)的仪器。

 

第1页-2.PNG

图1. Nicomp 3000系列纳米粒度仪

 

 

2.  纳米粒子的类型

 

纳米晶

 

活性药物成分(API)通常是结晶的。疏水性晶体可能难以配制成以亲水性载体机制递送。通过将尺寸减小到纳米晶体范围,纳米膨胀可以提高药物的生物利用度,其中溶解速度是限速步骤,例如水溶性差的药物3。这些纳米晶体通常需要使用表面活性剂或聚合物来稳定,包括在加工过程中。粒径的减小通过增加表面积A(图2)和饱和溶解度Cs来增加溶解速率。

 

 

第1页-1.PNG

 

图2. 表面积扩大,粒径减小

 

Noyes-Whitney方程(方程1)显示了A和Cs的增加将如何影响溶解速率dC/dt。

 

dC/dt=DA/Vh(Cs - Cx).......(方程1)

⚫ dC/dt=溶出速率

⚫ D=扩散系数

⚫ A=表面积

⚫ Cs=边界层的浓度

⚫ Cx=浓度API@给定时间

⚫ V=体积溶解介质

⚫ h=边界层的高度

 

基于脂质的液晶纳米颗粒(LCNP)是另一种能够提高疏水性和亲水性药物的生物利用度的递送系统。这些是通过将非层状液晶基质进行高剪切能量分散到水相中制备的自组装结构。LCNP的粒径是需要适当分析和控制的重要物理化学性质。Nicomp3000系列纳米粒度仪已成功用于确定LCNP分散体中的平均大小和聚集体的存在。4将紫杉醇加入LCNP分散体中并通过Nicomp3000系列纳米粒度仪和TEM分析,参见图3。

 

第2页-6.PNG

 

第2页-5.PNG

图3. LCNP分散体的Nicomp和TEM结果,版权复制自4

 

TEM图像表示较小的近25nm颗粒和100nm范围内的较大颗粒的双峰粒度分布 。较高的Nicomp结果是高斯强度分布平均值迫使整个分布成为一个峰值。较低的Nicomp结果利用专有的Nicomp非负最小二乘算法来报告更高的分辨率和更准确地描述实际粒度分布的双峰性质。突出了Nicomp3000系列纳米粒度仪的一个主要优点⸺即使在浓度低至0.2mg/mL时也能解析多峰分布。

 

胶束

 

另一种增加疏水性药物增溶作用的潜在药物递送系统是聚合物胶束。6当溶液中聚合物的浓度超过一定的临界胶束浓度(CMC)时,就会形成胶束。聚合物胶束是由两亲性嵌段共聚物合成的核壳纳米结构。胶束具有尺寸非常小(10‒100 nm)的优点,可以改善对实体瘤的被动靶向。通过用配体修饰表面,聚合物胶束能够进行位点特异的药物递送。

 

Nicomp3000系列纳米粒度仪已被用于许多基于胶束的研究项目中的颗粒尺寸测量。7-12在一项研究中,12聚合物胶束是使用聚己内酯(PCL)和聚乙二醇(PEG)共聚物形成的。以多西他赛(DTX)为模型药物,用前列腺特异性膜抗原(SMLP)小分子配体修饰表面。图4显示了胶束的自组装和药物负载的最终结构的内吞过程。 

 

 

第2页-4.PNG

图4. 靶向PSMA的DTX负载聚合物胶束的制备和内吞作用12


本研究中使用的两个样品通过Nicomp3000系列纳米粒度仪和TEM测试的粒度如图5所示。非靶向胶束的数据显示在左边,靶向胶束显示在右边。DLS数据看起来略大于TEM图像,这可能是由于在TEM分析之前水蒸发引起的PEG壳的收缩。

 

image.png

第3页-9.PNG

图5. DLS和TEM测定的非靶向(上)和靶向(下)聚合物胶束的尺寸12

 

脂质体

 

脂质体是一种双层囊泡,通常在制药工业中用作将化疗药物输送到肿瘤区域的药物输送系统。它们由磷脂组成,磷脂的极性末端连接到非极性链上,自组装成双层囊泡,极性末端面向水介质,非极性末端形成双层。在药物应用中,活性药物成分(API)通常被掺入脂质体,或者被掺入亲水口袋,或者被夹在双层之间,这取决于API的亲水性,见图6。表面改性对于靶向递送是常见的。

 

 

第3页-8.PNG

图6. 复杂的脂质体结构

 

在处理脂质体时监测粒径至关重要,Nicomp3000系列纳米粒度仪经常用于此应用。13-20在Entegris的一项内部研究中,脂质体是使用3:1:1的HSPC、胆固醇和mPEG-DSP的配方制成的。样品首先通过转速7200rpm混合10分钟,然后使用微射流均质机21搭配Y型腔采用25000psi的压力制成脂质体。对样品进行均质处理1次、3次、5次和10次,使其通过微流器。预混物和处理过的样品的图像(从左到右)如图7所示。

 

 

第3页-7.PNG

图7. 预混合,均质1次、3次、5次和10次

 

脂质体样品在Nicomp3000系列纳米粒度仪和AccuSizer®系列液体颗粒计数器上进行分析。Nicomp用于确定加工过程中强度平均尺寸的减小,而AccuSizer(LE传感器范围0.5‒400μm)用于量化分布中较大粒子尾部的存在。Nicomp检测结果如图8所示,AccuSizer检测结果如图9所示。

 

 

第4页-14.PNG

图8. Nicomp 检测结果从右到左;预混合,均质1次、3次、5次和10次

 

 

第4页-11.PNG

图9. AccuSizer 检测结果从右到左;预混合,均质1次、3次、5次和10次

 

使用DLS来确定平均尺寸,使用SPOS来量化尾部的存在和浓度,这个搭配在许多行业中都能见到,是USP<729>脂质注射乳剂中球粒径分布的一个组成部分。

 

用于过程监控的DLS

 

虽然绝大多数DLS检测都是在实验室进行的,但Entegris在客户生产操作中安装了多个设备,在生产工艺期间定期检测颗粒尺寸。23这些设备已用于监测药物输送的纳米颗粒制造过程中使用的高压均质过程、稀释样品以避免造成多重散射效应、检测样品,然后重复该程序(见图10)。整个测量周期约为两分钟,为监控生产工艺操作的工程师提供实时的粒度信息。

 

第4页-13.PNG

图10. 在线DLS系统示意图

 

图11显示了作为高压均质器下游压力函数的在线DLS结果。目标是确定将颗粒尺寸保持在非常接近100nm尺寸的最佳压力。在确定最佳压力(~10000 psi)后,使用在线DLS系统来确保整个批次的生产符合规范。

 

 

第4页-12.PNG

图11. DLS实时检测结果中的压力与颗粒尺寸对比 

 

3.  结论

 

Nicomp纳米粒度仪广泛用于研究、24-39质量释放测试和过程监测中纳米级药物递送系统的粒度和zeta电位分析。AccuSizer液体颗粒计数器提供了一种补充技术,用于确定较大颗粒的浓度,用于表明不稳定或未优化的配方或工艺条件。 




1 ISO/TS 27687, Nanotechnologies—Terminology and defifinitions for nanoobjects—Nanoparticle, nanofifibre and nanoplate,

2 ASTM E2456, Standard Terminology Relating to Nanotechnology,

3 Jens-Uwe et al., Nanocrystal technology, drug delivery and clinical applications, International Journal of Nanomedicine 2008:3(3) 295‒309

4 Zeng et al., Lipid-based liquid crystalline nanoparticles as oral drug delivery vehicles for poorly water-soluble drugs International Journal of Nanomedicine 2012:7

5 Scomparin et al., Novel folated and non-folated pullulan bioconjugates for anticancer drug delivery European Journal of Pharmaceutical Sciences 42 (2011) 547‒558

6 Cory et. Al, Polymeric Micelles for Drug Delivery, CurrPharm Des. 006;12(36):4669-84

7 Koizumi et al., Novel SN 38 Incorporating Polymeric Micelles, NK012 Eradicate Vascular Endothelial Growth Factor Secreting Bulky Tumors, Cancer Res 2006; 66: (20) with Nicomp data

8 Song et al., Self-assembled micelles of novel amphiphilic copolymer cholesterol-coupled F68 containing cabazitaxel as a drug delivery system, Int J Nanomedicine. 2014; 9: 2307‒2317.

9 Wang, Pharmacokinetics and Biodistribution of Paclitaxel-loaded Pluronic P105/L101 Mixed Polymeric Micelles, Pharmaceutical Society of Japan, 128(6), 2008

10 Bachar et al., Development and characterization of a novel drug nanocarrier for oral delivery, based on self-assembled b-casein micelles, Journal of Controlled Release, Volume 160, Issue 2, 10 June 2012

11 Jiang et al., Poly(aspartic acid) derivatives as polymeric micelle drug delivery systems J Appl Polym Sci 101: 2871‒2878, 2006

12 Jin et al., PSMA Ligand Conjugated PCL-PEG Polymeric Micelles Targeted to Prostate Cancer Cells, PLoS ONE 9(11): e112200.doi:10.1371/journal.pone.0112200

13 Zidan et al., Near-Infrared Investigations of Novel Anti-HIV Tenofovir Liposomes, The AAPS Journal, Vol. 12, No. 2, June 2010

14 Wong et al., A New Polymer-Lipid Hybrid Nanopart14 Wong et al., A New Polymer-Lipid Hybrid Nanoparticle System Increases Cytotoxicity of Doxorubicin Against Multidrug-Resistant Human Breast Cancer Cells, Pharmaceutical Research, Vol. 23, No. 7, July 2006

15 Zhang et al., The cargo of CRPPR-conjugated liposomes crosses the intact murine cardiac endotheli[1]um, J Control Release, 2012 October 10; 163(1)

16 Guan et al., Enhanced oral bioavailability of cyclosporine A by liposomes containing a bile salt, International Journal ofNanomedicine 2011:6

17 Ando et al., Reactivity of IgM antibodies elicited by PEGylated liposomes or PEGylated lipoplexes against auto and foreign antigens, Journal of Controlled Release, Volume 270, 28 January 2018

18 Johnston et al., Characterization of the drug retention and pharmacokinetic properties of liposomal nanoparticles containing dihydrosphingomyelin, Biochimica et Biophysica Acta 1768 (2007)

19 Cipolla et al., Modifying the Release Properties of Liposomes Toward Personalized Medicine, Journal of Pharmaceutical Sciences 103:1851‒1862, 2014

20 El-Ridy et al., Liposomal Encapsulation of Amikacin Sulphate for Optimizing Its Effiffifficacy and Safety, BJPR, 5(2): 98-116, 2015

21 Entegris Application Note Size Reduction by a Microflfluidizer,

22 Entegris Application Note USP 729 Testing

23 Entegris Application Note Nanoparticles for Drug Delivery

24 Wong et al., A New Polymer-Lipid Hybrid Nanoparticle System Increases Cytotoxicity of Doxorubicin Against Multidrug-Resistant Human Breast Cancer Cells, Pharmaceutical Research, Vol. 23, No. 7, July 2006

25 Martins et al., Brain delivery of camptothecin by means of solid lipid nanoparticles: Formulation design, in vitro and in vivo studies,International Journal of Pharmaceutics 439 (2012) 49‒ 62

26 Podaralla et al., Inflfluence of Formulation Factors on the Preparation of Zein Nanoparticles, AAPS PharmSciTech, Vol. 13, No. 3, September 2012

27 Chertok et al., Iron oxide nanoparticles as a drug delivery vehicle for MRI monitored magnetic targeting of brain tumors, Biomaterials, Volume 29,

28 Songa et al., Formulation and characterization of biodegradable nanoparticles for intravascular local drug delivery, Journal of Controlled Release, Volume 43, Issues 2‒3, 18 January 1997

29 Jain et al., Magnetic nanoparticles with dual functional properties: Drug delivery and magnetic resonance imaging, Biomaterials, Volume 29, Issue 29, October 2008

30 Guo et al., Aptamer-functionalized PEG‒PLGA na-noparticles for enhanced anti-glioma drug delivery, BiomaterialsVolume 32, Issue 31, November 2011

31 Nguone et al., Accumulating nanoparticles by EPR: A route of no return, Journal of Controlled Release Volume 238, 28 September 2016Menzel et al., In vivo evaluation of an oral self-emulsifying drug deliv-ery system (SEDDS) for exenatide, Journal of Controlled Release, Volume 277, 10 May 2018

32 Dorati et al., Gentamicin Sulfate PEG-PLGA/PLGA-H Nanoparticles: Screening Design and Antimicrobial Effffect Evaluation toward Clinic Bacterial Isolates, Nanomaterials 2018, 8, 37

33 Xu et al., The performance of docetaxel-loaded solid lipid nanoparticles targeted to hepatocellular carcinoma, Biomaterials 30 (2009) 226‒232

34 Piao et al., Human serum albumin-coated lipid nano-particles for delivery of siRNA to breast cancer,Na-nomedicine: Nanotechnol ogy, Biology, and Medicine 9 (2013)

35 Andersen et al., Chitosan-Based Nanomedicine to Fight Genital Candida Infections: Chitosomes, Mar. Drugs 2017, 15, 64

36 Kou et al., Preparation and characterization of the Adriamycinloaded amphiphilic chitosan nanoparti-cles and their application in the treatment of liver cancer, Oncology Letters 17: 7833-7841, 2017

37 Kuang et al., Dual Functional Peptide-Driven Nano-particles for Highly Effiffifficient Glioma-Targeting and Drug Codelivery, Molecular Pharmaceutics, April, 2016

38 Cooper et al., Formulation and in vitro evaluation of niacin-loaded nanoparticles to reduce prostaglandin mediated vasodilatory flflushing, European Review for Medical and Pharmacological Sciences, 2015; 19: 3977-3988 39 Martins et al., Physiochemical properties